DMSO能进色谱柱吗？

DMSO（二甲基亚砜）本身不是会“溶毁”柱子的一般溶剂，但它的物理化学性质和对检测/色谱行为的影响会带来一系列问题，必须按情况处理。下面按要点说明并给出可操作的建议。

要点概览

DMSO 与水、甲醇、乙腈互溶，但与非极性溶剂（如己烷）不相容。

DMSO 黏度高、沸点高（难挥发）、UV 截止波长高（约在 ~268 nm 附近），会增加柱压且在紫外检测下干扰波形。

在 LC‑MS 中 DMSO 会产生明显背景、离子化干扰或形成加合物（既可能抑制，也可能增强某些离子信号）。

直接大体积注入纯 DMSO 的样品到以弱起始流动相（高水相）的反相柱，常会造成峰前展宽、拖尾、分辨丢失甚至样品沉淀。

具体影响与注意

对柱子的化学相容性

大多数硅胶基反相（C18、C8）和聚合相（PS-DVB 等）对 DMSO 是化学兼容的，但仍要参照厂商的溶剂相容表。少数特殊键合相或涂层在强极性溶剂中性能会变化，需确认。

黏度与柱压

DMSO/water 混合物黏度明显高于 ACN/water，含较多 DMSO 时会显著提升系统背压，应避免高温以外的长期大比例使用。

UV 检测影响

DMSO 在低波长（<270 nm）有强吸收，会抬高基线或掩盖吸收峰。若检测波长常在 210–254 nm，DMSO 会严重干扰。

MS 检测影响

DMSO 在 ESI/APCI 中会产生背景离子，且可改变溶液化学环境，导致目标化合物信号抑制或出现 adduct（加合物）/簇化离子。低含量（很小百分比）有时会被用作“doping”以增强信号，但这需专门优化。

注入溶剂效应（最常见的问题）

若样品溶解在纯 DMSO，而起始流动相为高水相，强溶剂（DMSO）会导致峰拓宽、分离差、重现性差；严重时还会造成不可逆吸附或基线扰动。

实用建议（可直接操作）

优先把样品稀释/换溶剂：尽量将样品从纯 DMSO 转入与起始流动相相似的溶剂（如起始为 5–10% ACN/water，就用相同比例稀释）。若原液必须用 DMSO 保存，可在进样前做二次稀释（例如 1:10 至 1:100）到 mobile‑phase‑matched 溶剂。

限制注入体积：若确实需用含 DMSO 的溶液，尽量用极小注入体积（分析柱常 <1–5 µL，视柱尺寸而定）。

控制 DMSO 含量：作为经验值，在 LC‑MS 工作中令最终进入柱内的 DMSO 含量尽量 <1%（最好 <0.1%）以减少离子化干扰；在普通 UV‑HPLC 中尽量避免超过几 %，且检测波长需高于 DMSO 吸收影响区域。

使用保护措施：装用前置柱/保护柱以防柱损害，运行后用有机洗脱（如高 ACN 或 MeOH）和再水化步骤彻底冲洗，以去除残留 DMSO。

仪器维护与洗针：DMSO 易造成进样系统粘附与交叉污染，使用强洗针液并增加空白注射以检查残留。

查厂商资料：在方法开发前查色谱柱厂家的溶剂兼容表，确认是否允许长期使用高极性溶剂。

对于正相/正相(HILIC)或非极性正常相：DMSO 通常不适合做移动相主溶剂（与非极性溶剂不混溶或破坏分配行为），HILIC 中少量可用，但仍要评估效果。

故障排查（若已经用 DMSO 出现问题）

若出现高背压：考虑是 DMSO 高黏度或样品沉淀，停止运行，逐步用高有机冲洗再回到起始条件，检查柱压恢复与色谱峰形。

若 UV 基线不稳或无法识别峰：改用更高波长或更换样品溶剂后重跑。

若 LC‑MS 信号异常或强背景：减少 DMSO 含量或改用 ACN/MeOH，并做空白与溶剂对照，查看特征背景离子。

总结建议（简短）

DMSO 可以进入色谱柱，但尽量避免直接注入大量纯 DMSO 溶液；优先稀释/换溶剂或用与移动相匹配的溶剂，注入体积要小，运行后做好冲洗和维护。对于LC‑MS、低波长UV检测或正常相色谱，要特别谨慎或避免使用。始终参照色谱柱厂家的兼容性说明并做好方法验证。